- GBC-SD人胆囊癌细胞
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GBC-SD人胆囊癌细胞
细胞基本属性:
产品名称
GBC-SD人胆囊癌细胞(STR鉴定正确)
年龄性别
男,61岁
种属
人
组织来源
胆囊癌
细胞形态
上皮细胞样
生长特性
贴壁生长
细胞代数
10代以内
冻存条件
无血清冻存液,液氮储存
细胞详细介绍:
细胞别称 GBC-SD;人胆囊癌细胞
背景简介 GBC-SD细胞株是刘博、王占民等2000年从一位61岁的男性低分化胆囊癌患者中建立的;GBC-SD细胞的形状有多边形、纺锤形和正方形;GBC-SD细胞能分泌CEA和CA19-9。GBC-SD细胞倍增时间大约为21.4小时,可移植到裸鼠,生成的肿瘤与原发肿瘤相似。
使用权限 A类
细胞规格 1×106cells/T25培养瓶或者1mL冻存管包装
支原体检测 无
保藏机构 KCB; KCB 201187YJ
培养基 1640+10% FBS+PS
培养条件 气相:95%空气+5%二氧化碳;温度:37℃
冻存条件 无血清冻存液,液氮储存
倍增时间 ~21.4hours
STR鉴定位点 Amelogenin:X,Y;CSF1PO:11,11;D12S391:19,20;D13S317:8,12;D16S539:11,13;D18S51:14,21;D19S433:14,15.2;D21S11:30,31;D2S1338:17,24;D3S1358:17,17;D5S818:11,11;D6S1043:20,20;D7S820:11,12;D8S1179:10,12;FGA:23,23;Penta E:12,12;TH01:7,10;TPOX:11,11;vWA:16,17;
冻存条件无血清冻存液,液氮储
发货方式复苏发货(免运输费用)/ 冻存发货(需加干冰运输费用) 顺丰快递
供应限制仅限于科学研究,绝不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用
特别说明以下细胞培养冻存处理仅供参考,具体操作步骤以随货产品说明书为主
传代培养操作步骤:
一、贴壁培养
细胞传代培养操作步骤如下:
(1)传代前在倒置显微镜下观察细胞形态和生长密度,当细胞生长密度达到80%~90%时,即可进行传代。
(2)吸掉或倒掉培养瓶内的培养液。加入PBS清洗1~2次,左右轻轻摇晃后弃掉。
(3)根据培养瓶大小向瓶内加入适量含EDTA的,一般应覆盖整个培养瓶底。
(4)把培养瓶放入37℃ CO2培养箱进行消化,2~5min后拿出放在倒置显微镜下进行观察,当发现有70%~80%细胞收缩变圆、细胞间隙变大时,再轻轻拍打培养瓶使剩余细胞脱落,然后立即加入2倍量的培养液中止消化,使用吸头轻轻吹打,混合均匀,以防消化过度。
(5)吸出所有细胞悬液至离心管内,1000rpm/min离心3~5min。
(6)弃上清,加入适量培养液重悬细胞,轻轻吹打混匀,使细胞均匀分散。
(7)用吸头吸取适量细胞悬液,以适宜的密度接种于新的培养瓶中,补足培养液,摇匀,放置于37℃ CO2培养箱中进行培养。
(8)根据细胞生长状态确定换液或传代时间,甚至进行细胞冻存。
二、悬浮细胞
传代培养操作步骤如下:
一般实验室中悬浮细胞传代方法分为直接传代法和离心传代法(培养液中含有细胞碎片的情况下)。当在显微镜下观察到悬浮细胞已经长满至80%~90%(细胞悬液变黄)时,即可进行传代。
公司正在出售的产品:
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RPMI-8226细胞,人多发性骨髓瘤细胞 单核细胞增生李斯特氏菌 SV40T转化人脐静脉内皮细胞;PUMC-HUVEC-T1 人10(KLK 10)ELISA 试剂盒 CCL5/RANTES(regulated on activation normal T cell expressed and secreted) 活化T细胞表达和分泌的调节因子抗原 0.5mg
HOXB6: 同源盒蛋白B6抗体 HA Others H5N1 甲型流感 H5N1 (A/duck/Hunan/795/2002) 血凝素HA1 (Hemagglutinin) 人细胞裂解液 (阳性对照)
人胚胎皮肤成纤维细胞;HES 人激活素A(Activin A)ELISA试剂盒 CCL4/MIP-1 Beta(Macrophage Inflammatory Protein 1 beta) 巨噬细胞炎性蛋白1β抗原 0.5mg
注意事项:
(1)严格进行无菌操作,所用一切试剂及耗材均应无菌,且须在无菌超净工作台中紫外照射30min以上,以免细胞发生污染。
(2)所用培养液必须适宜细胞生存和生长。来源于不同动物种类、组织类型的细胞,对培养液的要求不一样,必要时可用预实验的方法选择适当的培养液。
(3)胎牛血清对于维持细胞生存,促进细胞生长起着关键作用。可根据文献或预实验选择合适的胎牛血清。一旦确定,就应保持用至实验完成。
(4)消化细胞时应避免消化时间过短导致消化不收集到的细胞数量少,或消化时间过长导致细胞成团块样絮状游离,这时的细胞已有损伤或死亡,影响细胞数量和实验进度。
(5)细胞离心的时候应避免离心力过小收集的细胞数量不够,或离心力过大对细胞产生损伤。离心后的细胞沉淀弃去上清后,应先弹散细胞沉淀,再加入培养液重悬,这样比直接吹打对细胞损伤小,可以提高细胞活率。
(6)吹打细胞时应尽量避免细胞的产生,以免损伤细胞,影响细胞状态(吹打过程中残留部分液体在吸头内可以减少气泡的产生)。